概述：
定点突变试剂盒可以在克隆于质粒DNA序列的特定位点诱导突变。理论上可以保证突变率达到100%。整个实验过程简单快捷只需要两个步骤。试剂盒不需要用到M13载体和甲基化步骤。该试剂盒可以诱导某个已知基因的特定碱基进行定点突变、 再突变成野生型、密码子突变、插入或者缺失等，因此可以用于功能基因组学和蛋白质组学的研究。另外由于试剂盒能够诱导特异基因突变，又可以应用于蛋白质工程学研究领域。定点突变试剂盒操作十分简单（根据我们提供的引物设计原则设计引物；用Muta-directTM酶进行15~18个循环的PCR扩增反应；MutazymeTM酶处理选择突变克隆；转化）。理论上在LB平板上的克隆100%是突变克隆，通过对突变克隆的测序分析，正确的突变可以应用于后续实验。

产品特点:

操作简便，无需特殊的实验技能
2~3天即可完成基因的定点突变
整个实验过程只需要用到两种酶:Muta-directTM  酶和MutazymeTM酶
使用范围广泛：可以用于点突变（P o i n t mutation）、缺失突变（Deletion）和插入突变 （Insertion）等
100%的突变效率

贮存条件:
请将试剂盒中提供的各种试剂贮存于-20℃。由于试剂盒中提供的反应缓冲液及dNTP是为反应专门优化的，所以不要用其它的反应缓冲液及dNTP代替。

试剂盒组成：　
试剂盒提供的对照模板及引物，可以完成5次对照实验。包括对照反应在内，本试剂盒共可进行10815次基因定点突变反应（每次反应体系50μl）。

定点突变对照实验：

试剂盒中提供的对照质粒为pUC18，通过它可 以判断实验的成功与否。pUC18质粒包含Lac Z基因，用试剂盒中提供的对照引物可以诱导pUC18中丝氨酸（TCG）突变为终止密码子（TAG），这样会导致Lac Z基因失活，因此LB平板上的克隆必须都为白色才证明突变成功。对于首次做突变实验的用 户，可以通过对照反应观察实验是否成功。

引物设计：

首先需要进行引物设计，设计时请参考如下原则:
通常引物长度为25~45mer，我们建议引物长度 为 30~35mer。
注：突变位点应该设计在引物的中央位置。
如果设定的引物长度为 30mer，接下来需要计 算引物的 Tm值，看是否达到 78℃（GC含量 应大于40%）。
如果 Tm值低于 78℃，则适当改变引物的长度 以使其Tm值达到78℃（GC含量应大于40%）。
①设计上下游引物时确保突变点在引物的中央 位置。
②计算引物的 Tm值，看是否达到 78℃，如果 Tm值低于 78℃，则适当改变引物的长度以 使其Tm值达到78℃（GC含量应大于40%）。
③最好使用经过纯化的引物。 Tm值计算公式： Tm=0.41 ×(% of GC)-675/ L+81.5
注：L：引物碱基数；% of GC：引物 GC含量。

引物设计实例：

以GCG→ACG为例：
5'-CCTCCTTCAGTATGTAGGCGACTTACTTATTGCGG-3'
①首先设计30mer长的上下游引物，并将A(T)设计在引物的中央位置。
Primer #1: 5'-CCTTCAGTATGTAGACGACTTACTTATTGC-3’
Primer #2: 5'-GCAATAAGTAAGTCGTCTAATACTGAAGG-3'
②引物GC含量为40%，L为30，将这两个数值带入Tm值计算公式，得到其Tm=75.5（Tm=0.41×40-675/30+81.5）。通过计算可以看出其Tm低于78℃，这样的引物是不合适的，所以必须调整引物长度。
③重新调整引物长度。
Primer #1: 5'-CCTCCTTCAGTATGTAGACGACTTACTTATTGCGG-3'
Primer #2: 5'CCGCAATAAGTAAGTCGTCTACATACTGAAGGAGG-3'
在引物两端加5mer（斜体下划线处），这样引物的GC含量为45.7%，L值为35，将这两个数值带入Tm值,计算公式，得到其Tm为80.952（Tm=0.41×47.5-675/35+81.5），这样的引物就可以用于突变实验了。

实验前注意事项：

试剂盒提供了优化的实验方案，按步骤操作诱 导目的基因突变率几乎可达100%。

白色菌落的形成与突变效率是不同的，在实验 过程中重要的是出现白色单菌落而不是菌落出 现的数量。如果出现白色菌落则证明在目的基 因上已经发生了突变。有时由于MutazymeTM 处理步骤的失误，残留的模板质粒也能形成白 色菌落。但如果您操作无误，这种情况一般不会发生。
白色菌落的数量与突变率是没有直接关系的，而与PCR反应条件和感受态细胞转化效率有关。

如果突变没有出现在目的核苷上时，请检测合 成引物的纯度。

当PCR反应完成后，MutazymeTM酶的用量就 会影响到实验结果。若模板过量会产生阴性结 果，因此MutazymeTM和质粒模板的用量必须 适当。

试剂盒适用于15kb甚至大于15kb的模板突变， 但是当所用的质粒模板大于10kb时，白色菌落 数量会减少，不过这与突变效率没有关系。

定点突变操作步骤：
[A] 诱导突变基因（PCR反应）以待突变的质 粒为模板，用设计的引物及Muta-directTM酶进行 PCR扩增反应，诱导目的基因突变。

1. 设计点突变引物。
[注]参考引物设计指导

2. 准备模板质粒DNA
[注]用dam+型菌株（例如DH5 α菌株）作为宿主菌。在end+型菌株中常有克隆数低的现象，但是对突变效率没有影响。提取质粒DNA时我们建议您使用本公司的质粒提纯试剂盒。

3. [选项]对照反应体系（50μl反应体系）

4. 样品反应体系（50μl反应体系）

5. PCR反应条件
[注]按如下参数设置PCR扩增条件。

6. PCR扩增反应完成后冰育5分钟，然后置于室温 （避免反复冻融）。

[注] 按下列提供的PCR条件进行扩增，控制PCR循 环数。注意当突变点位点超过4个时会发生突变率 降低的现象。

[B] 突变质粒选择
PCR反应结束后使用MutazymeTM酶消化甲基 化质粒从而选择突变质粒DNA。

1. 准备PCR反应产物。

2. 加入1μl（10U/μl）MutazymeTM酶37℃温育 1小时。

[注]当质粒DNA用量过多时MutazymeTM酶可 能发生与样品反应不完全的现象。因此我们建议为了保证突变率请严格遵照实验步骤进行操作。如果 突变率低，可以适当延长反应时间或增加 MutazymeTM酶用量。

[C]转化
反应完毕后在质粒DNA上会产生缺口，当把 这个质粒DNA转入E.coli中时请选择dam+型菌株， 例如DH5α。

1. 将10μl样品加到50μl感受态细胞里，然后 放置在冰上30分钟。

2. 接下来可以参照一般的转化步骤进行。

序列分析：

通常当LB平板上出白色菌落则表明发生了突变。
为了证实这一结果，我们建议对白色单菌落进 行测序分析。

突变实例：

以GGC→GAC为例
[突变反应体系]